动物组织中二恶英检测前需要进行哪些样品预处理步骤
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二恶英是一类具有强毒性的持久性有机污染物,通过食物链富集于动物组织(如肌肉、肝脏、脂肪),其检测是评估食品安全与环境风险的关键。而样品预处理作为二恶英检测的核心前置环节,需从复杂基质中提取目标物、去除脂肪及干扰物并实现富集,直接决定后续分析的准确性。本文系统拆解动物组织二恶英检测前的预处理步骤,详细阐述各环节的操作要点与注意事项。
样品采集与初始保存
动物组织采样需保证代表性:肉类样品应混合肌肉(背部、腿部)、肝脏、皮下脂肪等部位,避免单一部位偏差——二恶英脂溶性强,脂肪含量高的部位(如皮下脂肪)浓度更高。采样工具需用玻璃或不锈钢(禁用塑料,避免增塑剂干扰),采样后立即分装为2-5g小份,快速冷冻至-20℃以下(长期保存需-80℃),全程避免反复解冻-冷冻(防止脂肪氧化产生干扰物)。运输时用干冰保持低温,防止样品变质。
容器需提前清洁:玻璃容器用重铬酸钾洗液浸泡24小时,去离子水冲洗3次,马弗炉450℃灼烧2小时;不锈钢工具用丙酮超声清洗3次,自然晾干后使用,避免残留有机物影响检测。
样品均质化与内标添加
均质化目的是打破细胞结构,使样品均匀以提高提取效率。新鲜或冷冻组织需冷冻研磨:-80℃预冷2小时后,用不锈钢研磨机粉碎,相较于常温绞碎,可避免组织汁液流失与脂肪氧化。研磨后过40目筛,确保颗粒直径<0.42mm,保证溶剂与样品充分接触。
内标添加是定量关键:向均质样品中加入13C标记的二恶英同系物(如13C-2,3,7,8-TCDD),浓度与预计目标物匹配(通常10-50pg/g)。内标需与目标物性质相似,校正提取、净化中的损失。添加后用玻璃棒或涡旋混合器充分搅拌,确保均匀分布。
脂肪含量测定与提取溶剂选择
动物组织脂肪含量直接影响提取效率与结果表达(二恶英浓度以“pg/g脂肪”为单位),需用索氏提取法测定:取5g均质样品,滤纸包裹后放入索氏提取器,加150mL正己烷回流提取8小时,收集提取液旋转蒸发至干,称量脂肪残渣计算含量(脂肪含量=脂肪重量/样品重量×100%)。
提取溶剂选正己烷-二氯甲烷(1:1)混合液:正己烷溶解脂肪能力强,二氯甲烷增强极性稍强的二恶英(如多氯代二苯并呋喃)提取效率。溶剂需重蒸纯化或用色谱纯级,避免引入新干扰物。
目标物提取:常用方法与操作要点
索氏提取适用于批量处理:将含内标的均质样品用滤纸包裹,放入索氏提取器,加100mL混合溶剂回流16-24小时(脂肪含量>20%需延长至24小时)。提取效率高但耗时久,结束后将提取液转移至圆底烧瓶待处理。
加压流体提取(PFE)快速高效:样品装入10-30mL不锈钢萃取池,加混合溶剂,设置温度100-120℃、压力1500-2000psi、静态提取5分钟,循环2次。溶剂用量仅20-30mL,30分钟完成提取,但设备成本较高。
微波辅助提取(MAE)适用于含水分组织(如肝脏):样品加50mL混合溶剂放入微波罐,80-90℃、300W提取30分钟。速度快但需控温——温度过高会导致脂肪分解产生干扰物。提取后冷却过滤,收集提取液。
提取液的除水与过滤
提取液含少量水分(样品或溶剂残留),会降低净化柱效率,需除水:加提取液体积1/5的无水硫酸钠(450℃灼烧4小时除有机物),搅拌5分钟静置30分钟,充分吸收水分。
除水后用定性滤纸或0.45μm有机相滤膜过滤,去除样品残渣与多余无水硫酸钠。过滤液转移至干净圆底烧瓶,准备净化处理。
净化处理:去脂与干扰物去除
硅胶柱净化是常用去脂方法:取10g活化硅胶(130℃烘12小时),用正己烷湿法装柱(柱长20cm、内径1cm),确保无气泡。提取液缓慢上柱,液面降至硅胶表面时,用50mL正己烷淋洗(1-2滴/秒),去除未吸附的脂肪与弱极性干扰物;随后用80mL正己烷-二氯甲烷(3:1)洗脱,收集含二恶英的洗脱液。
凝胶渗透色谱(GPC)去除大分子脂肪:用聚苯乙烯-二乙烯基苯柱,流动相为环己烷-乙酸乙酯(1:1),流速1.5mL/min。注入提取液后,收集15-30分钟馏分(需用标准品预确定二恶英保留时间),此馏分不含大分子脂肪,仅含小分子二恶英与少量干扰物。
活性炭柱富集二恶英:将GPC馏液加入活性炭-中性氧化铝混合柱(2g活性炭+3g氧化铝),用50mL正己烷淋洗去除极性干扰物(酚类、酯类);再用60mL二氯甲烷-甲苯(1:1)洗脱,收集高纯度二恶英馏分。
浓缩与定容
净化后的洗脱液需浓缩提高浓度:转移至圆底烧瓶,用旋转蒸发器浓缩——水浴温度35-40℃、真空度0.08-0.1MPa,旋转至体积1-2mL(避免蒸干,防止二恶英损失)。
浓缩液转移至2mL进样瓶,用氮吹仪(氮气纯度≥99.999%)浓缩至0.5-1mL,控制气流速度(液面微沸为宜),避免气流过大吹走二恶英。最后用正己烷定容至1mL,密封后4℃冷藏,待高分辨气相色谱-高分辨质谱(HRGC-HRMS)分析。
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