医学检验中尿液有形成分分析的标准化操作与结果判读标准

尿液有形成分分析是医学检验中反映泌尿系统及全身疾病的重要手段，其结果的可靠性直接依赖标准化操作与规范判读。从标本采集到报告签发的全流程标准化，既是保证检验质量的核心，也是临床医师准确解读病情的基础。本文围绕尿液有形成分分析的关键环节，详细阐述标准化操作要点与结果判读标准，为检验人员提供可落地的实践指南。

标本采集与预处理的标准化要求

标本质量是尿液有形成分分析的第一步，需严格遵循采集规范。首选晨尿（清晨第一次尿），因其浓缩度高、有形成分稳定，能更准确反映病理状态；随机尿适用于急诊，但需避免剧烈运动、大量饮水后采集，以免稀释标本。采集容器需使用清洁、干燥、无防腐剂的一次性尿杯，避免使用含消毒剂或洗涤剂的容器，防止破坏有形成分。

采集量需保证10-15ml，过少会导致离心后沉渣量不足，影响镜检结果；过多则可能增加标本稀释风险。标本采集后需在2小时内送检，若无法及时检测，应冷藏（2-8℃）保存，但冷藏时间不超过4小时；如需长期保存，可添加少量防腐剂（如甲醛，但需注意甲醛对细胞形态的影响，需在报告中注明）。

特殊标本如导尿或膀胱穿刺尿，需在采集时严格无菌操作，避免细菌污染；小儿或尿失禁患者的标本，需使用清洁尿袋收集，但需尽快转移至尿杯，防止尿液与尿袋材质发生反应。预处理时需充分混匀标本（轻轻颠倒8-10次），避免有形成分沉淀，确保检测的代表性。

尿沉渣分析仪的标准化操作要点

目前临床常用的尿沉渣分析仪多基于流式细胞术或成像技术，其操作需严格遵循厂家说明书与实验室SOP。首先是仪器校准，需使用厂家提供的标准颗粒（如红细胞、白细胞标准品）定期校准（每月1次），校准项目包括细胞计数的准确性、形态识别的特异性，确保仪器性能稳定。

检测前需检查仪器状态，包括试剂（鞘液、染色液）的有效期与液面高度，避免因试剂不足导致检测失败；标本需经300目滤网过滤，去除黏液丝、纤维等大颗粒杂质，防止堵塞仪器流路。检测参数设置需统一，如稀释倍数（通常为1:10）、流速（根据仪器型号调整，一般为10-20μl/min），避免因参数差异导致结果偏差。

仪器检测时需注意标本的温度，最佳检测温度为18-25℃，过低会导致细胞皱缩，过高可能使细胞溶解；检测后需及时清洗仪器流路，使用专用清洗液去除残留的标本与试剂，防止交叉污染。对于仪器报警的结果（如“红细胞形态异常”“管型增多”），需立即进行手工镜检确认，不可直接报告仪器结果。

手工镜检的标准化操作流程

手工镜检是尿液有形成分分析的“金标准”，用于验证仪器结果或检测仪器无法识别的有形成分（如蜡样管型、特殊结晶）。离心操作需标准化：取10ml混匀尿液于离心管，以1500rpm离心5分钟，弃去上清液，保留0.2ml沉渣（约管底1cm），避免过度离心导致细胞破碎或沉渣丢失。

镜检前需将沉渣充分混匀（用吸管轻轻吹打5次），取1滴沉渣置于载玻片上，加盖盖玻片（避免气泡），使用普通光学显微镜观察。观察顺序为：先低倍镜（10×10）扫视全片，寻找管型、结晶等大颗粒有形成分，计数10个低倍镜视野（LPF）的管型数；再换高倍镜（10×40），观察细胞形态，计数20个高倍镜视野（HPF）的红细胞、白细胞数。

染色技术可提高有形成分的识别率：如苏丹III染色用于鉴别脂肪球（呈橘红色），结晶紫-亚甲蓝染色（瑞氏染色）用于区分细菌与黏液丝（细菌染成紫色，黏液丝呈淡蓝色），过碘酸-Schiff染色用于识别肾小管上皮细胞（胞浆呈红色）。染色时需控制染色时间（如苏丹III染色10分钟）与染色液浓度，避免染色过深或过浅影响判断。

常见尿液有形成分的判读标准

红细胞：正常形态为双凹圆盘状，直径约7μm，无核；异常形态包括皱缩红细胞（因标本浓缩或高渗导致，呈锯齿状）、环形红细胞（胞浆内血红蛋白丢失，呈环状）、影形红细胞（血红蛋白完全丢失，仅存细胞膜）。参考范围为0-3个/HPF，超过则提示血尿，需结合形态判断来源（如均一性红细胞多为非肾小球性血尿，异形红细胞多为肾小球性血尿）。

白细胞：以中性粒细胞为主，直径约10μm，胞浆内有细小颗粒，核分2-5叶；脓细胞为变性的白细胞，胞浆浑浊、颗粒粗大，核结构不清，常见于泌尿系统感染。参考范围为0-5个/HPF，增多提示感染或炎症。

管型：由肾小管分泌的Tamm-Horsfall蛋白凝聚而成，需在低倍镜下观察。透明管型为无色透明，呈圆柱状，两端钝圆，参考范围0-1个/LPF；颗粒管型内含粗细不等的颗粒，提示肾小管损伤；细胞管型含肾小管上皮细胞或白细胞，如上皮细胞管型提示肾小管坏死，白细胞管型提示肾盂肾炎；蜡样管型呈蜡黄色、质地较厚，提示肾小管严重变性坏死。

结晶：草酸钙结晶为无色、折光性强的八面体或哑铃形，常见于高钙尿或草酸代谢异常；尿酸结晶为黄色、针状或菱形，常见于痛风或高尿酸血症；磷酸铵镁结晶为无色、信封状或菱形，常见于尿路感染（变形杆菌所致）；胆红素结晶为橘红色、针状或颗粒状，提示肝细胞性黄疸或胆道梗阻。结晶判读需结合临床信息，排除生理性结晶（如饮食因素导致的草酸钙结晶）。

异常结果的确认与复核流程

当仪器或手工镜检发现异常结果（如红细胞>5个/HPF、管型>1个/LPF），需首先排查标本误差。如红细胞增多需确认标本是否被月经血、痔疮血污染，可通过询问患者月经史、观察标本颜色（污染血呈鲜红色，真性血尿呈洗肉水样）判断；白细胞增多需排除标本放置过久导致的白细胞溶解，可通过观察白细胞形态（溶解的白细胞胞浆模糊、核结构不清）鉴别。

若标本无误差，需进行形态学复核：红细胞异常形态需计数异形红细胞比例（>80%提示肾小球性血尿，<20%提示非肾小球性血尿）；管型异常需确认管型类型，如颗粒管型需区分细颗粒与粗颗粒（粗颗粒管型提示更严重的肾小管损伤）；结晶异常需结合尿液pH值（如尿酸结晶易在酸性尿中出现，磷酸铵镁结晶易在碱性尿中出现）。

复核后需结合临床信息，如患者是否有尿频、尿急、尿痛（提示尿路感染），是否有水肿、蛋白尿（提示肾小球疾病），是否有关节痛（提示痛风），避免单纯依赖检验结果作出判断。若结果与临床不符，需重新采集标本复查，确保结果的可靠性。

尿液有形成分分析的质量控制策略

室内质控需每日进行，使用定值尿沉渣质控品（含红细胞、白细胞、管型等有形成分），按照日常检测流程操作，记录结果并绘制质控图（如Levey-Jennings图）。若结果超出质控范围（如±3SD），需查找原因：仪器故障（如流路堵塞）、试剂问题（如染色液过期）、操作误差（如离心时间不足），解决后重新检测，直至质控结果在控。

室间质评需定期参加（每年2-3次），使用临检中心发放的质评标本，按照要求检测并回报结果。对比质评结果与靶值的差异，若差异超过可接受范围（如红细胞计数差异<15%），需分析原因：如镜检技能不足导致的形态误判，或仪器校准不及时导致的计数误差，针对性改进操作。

人员培训是质量控制的关键，检验人员需定期参加镜检技能培训（每季度1次），通过读片考核（如识别异常红细胞、罕见管型）提高判读准确性；新入职人员需进行3个月的镜检带教，考核合格后方可独立操作。此外，实验室需定期更新SOP，结合最新的行业标准（如CLSI的尿液分析指南）调整操作流程。

结果报告的标准化规范

结果报告需使用国际通用术语，避免使用方言或非标准术语（如“红血球”改为“红细胞”，“脓球”改为“脓细胞”）。单位需统一：红细胞、白细胞用“个/HPF”，管型用“个/LPF”，结晶用“+/HPF”或“++/HPF”表示数量。参考范围需根据实验室自身情况制定（如晨尿参考范围：红细胞0-3个/HPF，白细胞0-5个/HPF），或采用行业标准参考范围。

报告内容需包括标本信息（姓名、性别、年龄、标本类型、采集时间）、检测方法（如“尿沉渣分析仪+手工镜检”）、有形成分结果（如红细胞3个/HPF，白细胞2个/HPF，透明管型0个/LPF）、异常结果标注（如红细胞5个/HPF标注“↑”，并在备注中说明“镜检见异形红细胞占60%”）。

报告签发前需由资深检验人员复核，核对标本信息与检测结果的一致性，确认异常结果已完成复核流程，避免错发或漏发报告。报告需及时发送至临床（通常2小时内），并保留原始数据（如仪器检测图谱、手工镜检记录）至少2年，便于后续追溯与质量改进。