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生物制品微生物限度检测中控制菌检查的操作要点

三方检测机构 2025-01-04

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生物制品作为用于预防、治疗或诊断的特殊药品,其微生物安全性直接关系到使用者健康。控制菌检查是生物制品微生物限度检测的核心环节,旨在检出大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌等致病性微生物,防止不合格产品流入市场。操作要点的规范性直接影响结果准确性——任何环节疏漏都可能导致假阳性或假阴性,进而影响产品安全评估。本文结合《中国药典》标准,梳理控制菌检查的关键操作要点,为实验室实践提供参考。

样品处理的操作要点

样品处理的核心是“去除抑菌成分+分散微生物”。液体制品(如疫苗)需梯度稀释:取10ml样品加90ml灭菌生理盐水制成1:10稀释液,含青霉素的制品需加青霉素酶(每ml加100-1000U)中和抑菌作用;固体制品(如冻干粉)需均质处理:用无菌研磨器将样品与生理盐水混合成混悬液,确保微生物充分分散;含强抑菌成分的制品用薄膜过滤法:通过0.45μm滤膜截留微生物,用100ml生理盐水冲洗3次去除抑菌剂,再将滤膜贴于培养基。

处理前需验证方法有效性:将标准菌株(如大肠埃希菌ATCC25922)加入样品,处理后培养,回收率需≥70%——若回收率低,说明抑菌成分未完全去除或微生物分散不充分,需调整稀释倍数或中和剂用量。

操作细节需注意:取固体制品混悬液时要取上清液(避免颗粒干扰),滤膜取出时夹边缘(不接触表面),确保微生物与培养基完全接触。

培养基的选择与适用性验证

控制菌检查需用选择性和鉴别培养基:大肠埃希菌用麦康凯琼脂(胆盐抑制革兰阳性菌,乳糖发酵显粉红色),金黄色葡萄球菌用甘露醇氯化钠琼脂(甘露醇发酵显黄色),沙门菌用SS琼脂(枸橼酸盐抑制杂菌,无色菌落为可疑)。

培养基需做适用性验证:促生长试验——将标准菌株(10-100CFU)接种培养基,37℃培养24小时,需生长旺盛并形成典型菌落;抑制试验——将非目标菌(如枯草芽孢杆菌)接种,需无生长或生长微弱。例如麦康凯琼脂需促进大肠埃希菌生长,同时抑制枯草芽孢杆菌。

培养基制备需注意:加热溶解时避免过度煮沸(破坏营养),灭菌后快速冷却至45℃倒平板(防止凝固不均匀);储存时密封防潮,使用前检查外观(无浑浊、变色)。

阳性与阴性对照的设置要点

对照试验是验证方法有效性的关键。阳性对照需用对应标准菌株:检查大肠埃希菌时,取10-100CFU的大肠埃希菌ATCC25922加入灭菌生理盐水,按样品流程处理——阳性对照必须生长,否则方法无效(如培养基失效),需重做。

阴性对照用灭菌生理盐水代替样品:按相同流程操作,需无任何生长——若有生长,说明环境或试剂污染,结果不可靠。

对照需与样品同步进行:用相同批次培养基、耗材和仪器,确保条件一致。例如样品用薄膜过滤法,阳性对照也需用同型号滤膜、相同冲洗液,避免因条件差异导致对照异常。

接种与培养条件的控制

接种需严格无菌操作:在生物安全柜中进行,操作前用75%乙醇消毒台面和双手,接种环灼烧至红热(冷却30秒再用)。液体制品取1ml稀释液接种增菌肉汤,固体制品取上清液接种,薄膜过滤法则将滤膜贴于培养基(无气泡)。

培养条件需匹配目标菌特性:温度——大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌需35-37℃,沙门菌同此温度;时间——增菌培养18-24小时(如沙门菌的亚硒酸盐增菌液),选择性培养24-48小时(如麦康凯琼脂培养48小时观察典型菌落)。

培养箱需稳定:温度波动≤±1℃,每天记录两次温度;平板倒置培养(防止冷凝水冲散菌落),例如麦康凯琼脂倒置培养可避免粉红色菌落扩散。

分离培养与鉴定的关键步骤

分离培养需获得单菌落:增菌液取1ml涂布于选择性培养基,螺旋式涂布确保均匀,培养后挑取典型菌落——大肠埃希菌在麦康凯上是粉红色圆形菌落,金黄色葡萄球菌在甘露醇琼脂上是黄色凸起菌落,沙门菌在SS琼脂上是无色透明菌落。

鉴定需结合生化与血清学试验:大肠埃希菌做IMViC试验(靛基质+、甲基红+、VP-、枸橼酸盐-),金黄色葡萄球菌做血浆凝固酶试验(阳性),沙门菌做硫化氢试验(阳性)和血清凝集试验(O抗原、H抗原阳性)。

鉴定细节需注意:挑取菌落时轻触表面(不刮培养基),生化试剂用新鲜品(如蛋白胨水需24小时内使用,避免色氨酸分解导致靛基质假阴性)。

结果判断的逻辑要点

结果判断遵循“先对照后样品”:先看阳性对照——必须生长且符合特征,否则方法无效;再看阴性对照——必须无菌生长,否则污染,结果作废;最后看样品——有典型菌落且鉴定符合,则阳性;无典型菌落或鉴定不符,则阴性。

若样品增菌液浑浊但选择性培养基无典型菌落,需延长培养至48小时,或更换培养基(如用伊红美蓝琼脂代替麦康凯)。例如某些大肠埃希菌在麦康凯上生长慢,24小时无典型菌落,48小时后才出现粉红色。

结果需记录细节:菌落形态(大小、颜色)、生化结果(+/-)、血清学结果(凝集/不凝集),便于追溯。

污染控制的核心措施

环境控制:操作在二级生物安全柜中进行,每6个月检测高效过滤器(无泄漏)、气流速度(0.38-0.51m/s);操作前紫外消毒30分钟,避免打开玻璃门。

试剂与耗材控制:培养基、稀释液121℃灭菌15分钟,使用前查外观;滤膜、镊子用一次性灭菌品,中和剂、血清4℃储存,用前查变质(如血清浑浊)。

操作控制:戴无菌手套(每样品换一次),避免说话咳嗽,接种环灼烧灭菌,样品瓶开口用乙醇消毒。环境监测每月一次:空气沉降菌≤10CFU/皿,表面微生物≤5CFU/100cm²,手微生物≤10CFU/手。

人员操作的规范性要求

人员需定期培训:熟悉无菌技术、控制菌形态与生化特性、SOP流程(如稀释倍数、培养时间),考核合格后方可独立操作。

操作时专注:不同样品间用乙醇消毒手套,避免交叉污染;挑取菌落轻触表面,接种时沿管壁加样(无气泡);中途离开需关闭安全柜,回来重新消毒。

问题排查能力:若阳性对照不生长,需检查培养基灭菌记录、接种量、培养温度;若阴性对照生长,需查培养基、耗材或环境是否污染。

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