抗生素类药品配方检测的效价测定实验步骤

抗生素类药品的效价测定是保障其临床疗效与质量稳定性的核心环节，通过量化活性成分的生物学效力，直接关联药品对微生物的抑制能力与实际治疗效果。目前主流方法为微生物检定法（如牛津杯法），依托抗生素对特定供试菌的抑菌作用，将样品与标准品的抑菌圈效果对比计算效价。实验需严格控制无菌操作、剂量梯度与结果平行性，是药品配方检测中验证活性成分有效性的关键技术步骤。

实验前准备与试剂器材核查

实验前需确认所有试剂的合法性与有效性：抗生素标准品需来自法定检定机构（如中检院），且在有效期内；培养基（如Mueller-Hinton琼脂）需按说明书配制，121℃高压灭菌15分钟后冷却至45-50℃备用；pH7.0磷酸盐缓冲液需提前配制并灭菌，用于稀释标准品与供试品。

器材方面，牛津杯（内径6mm、外径8mm、高10mm）需160℃干热灭菌2小时；移液枪头、培养皿、接种环等需高压灭菌或使用一次性无菌耗材；超净工作台需提前30分钟开紫外消毒，通风10分钟后使用；培养箱需预热至37℃（匹配供试菌最适温度）。

实验人员需穿无菌工作服、戴手套，操作前用75%乙醇擦拭双手与台面，避免杂菌污染——这是实验成功的基础前提。

供试菌液的制备与浓度调整

供试菌需选对目标抗生素敏感的标准菌株：比如青霉素用金黄色葡萄球菌ATCC29213，红霉素用枯草芽孢杆菌CMCC(B)63501。菌株需在新鲜斜面培养基上37℃活化18-24小时，确保活性。

取活化后的菌苔，用无菌生理盐水洗脱制成菌悬液，用麦氏比浊管调整至0.5麦氏单位（约1.5×10^8CFU/mL），再稀释10倍至1.5×10^7CFU/mL——这个浓度能保证平板上菌苔均匀，抑菌圈边缘清晰。

菌液需在30分钟内使用，若暂存需放4℃冰箱，但不超过2小时——细菌死亡会直接影响抑菌效果。

标准品溶液的梯度稀释

标准品需用磷酸盐缓冲液溶解为储备液（如青霉素G钠标准品每毫克含1670U，称0.0598g溶至100mL得1000U/mL储备液），现配现用或-20℃分装保存。

将储备液稀释为5个等比梯度浓度（如10、20、40、80、160U/mL），覆盖供试品预期效价范围——比如供试品预计50U/mL，标准品设25-200U/mL。稀释时每步需涡旋振荡1分钟，确保浓度均匀。

稀释后的标准品需冰浴保存，避免抗生素降解；使用前需再次核对浓度，防止稀释错误。

供试品溶液的制备与净化

供试品按剂型处理：片剂研细粉，称取相当于1000U的量；注射液直接吸规定体积；胶囊取内容物混匀后称量。

加缓冲液涡旋5分钟溶解，难溶物可加少量乙醇（≤5%）或超声10分钟助溶——助溶剂浓度不能太高，否则会抑制供试菌生长。

用0.22μm无菌滤膜过滤滤液，去除杂菌与颗粒；滤液稀释至与标准品浓度相近（如供试品预计50U/mL，稀释至50U/mL左右），备用。

平板的制备与供试菌接种

常用混菌法制备平板：取1mL供试菌液加入20mL45-50℃的融化培养基，快速混匀（避免气泡），倒至90mm无菌培养皿，水平放置30分钟凝固——培养基厚度约4mm，过厚或过薄都会影响抑菌圈大小。

若供试菌对温度敏感，可用涂布法：先倒底层培养基，冷却后取0.1mL菌液用涂布器均匀涂于表面，待菌液吸收后使用。

平板需30分钟内使用，或4℃保存不超过2小时，防止培养基干燥。

牛津杯加样与恒温培养

用无菌镊子将牛津杯垂直放于平板，每个平板放4-6个，杯间距≥24mm，边缘距平板边≥15mm——避免抑菌圈重叠或边缘效应。

用移液枪向每个牛津杯加200μL溶液（标准品或供试品），缓慢注入避免溢出；若溢出需用无菌纸吸干，否则抑菌圈会变形。

加样后静置15分钟（室温），让溶液渗透培养基；然后倒置平板（防冷凝水掉落到抑菌圈），37℃培养16-18小时——时间需严格控制，过短抑菌圈小，过长则模糊。

抑菌圈测量与数据记录

培养结束后，观察抑菌圈形态：正常应为圆形、边缘清晰、无杂菌。用游标卡尺或抑菌圈测量仪测直径，每个圈测垂直两个方向，取平均值（精确到0.1mm）。

若抑菌圈边缘有微小菌生长，以明显抑制的边缘为准；同一浓度做3个平行样，计算平均值与标准差——标准差≤5%才符合要求，否则需重测。

记录每个浓度对应的抑菌圈直径，确保数据准确可追溯。

效价计算与结果验证

用平行线法计算：将标准品的对数浓度（lgC）与抑菌圈直径（D）做线性回归，得方程D=a+b×lgC（r≥0.99才有效）。

将供试品的抑菌圈平均直径代入方程，算出供试品溶液浓度，再乘以稀释倍数得原始供试品效价——比如供试品溶液浓度52U/mL，稀释10倍，则原始效价520U/g。

结果需符合：供试品效价在标准品的90%-110%范围内，否则需检查步骤（如稀释误差、接种量不准）并重新实验。